2019-03-26
前言
2019年3月25日,國際著名學(xué)術(shù)期刊《Nature Medicine》在線發(fā)表了邦耀科學(xué)家吳宇軒研究員在基因治療方向的題為“Highly efficient therapeutic gene editing of human hematopoietic stem cells”的研究成果[1]。華東師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院吳宇軒研究員和哈佛大學(xué)醫(yī)學(xué)院及波士頓兒童醫(yī)院曾靜是該論文的共同第一作者。該研究證實通過CRISPR/Cas9介導(dǎo)的基因編輯技術(shù)有望徹底根治由β-globin珠蛋白突變引發(fā)的系列遺傳疾病。
一、研究背景
β-地中海貧血是一種由于β-珠蛋白(β-globin)亞基突變導(dǎo)致患者自身的成人血紅蛋白(HbA)異常的遺傳性疾病。鐮刀狀貧血(SCD)與β-地貧致病機(jī)理類似,都是β亞基突變導(dǎo)致的單基因遺傳性疾病,主要癥狀為:HbA結(jié)構(gòu)異常,紅細(xì)胞變形,出現(xiàn)典型的鐮刀形狀,無法有效通過微循環(huán),運(yùn)輸氧能力降低,出現(xiàn)貧血。不過鐮刀狀貧血在國內(nèi)患者很少,主要發(fā)生在黑色人種中,在非洲黑人中的發(fā)病率最高,在我國的南方地區(qū)也發(fā)現(xiàn)有少數(shù)病例。
《中國地中海貧血防治藍(lán)皮書(2015)》的數(shù)據(jù)顯示,目前我國“地貧”基因攜帶者約3000萬人,涉及近3000萬家庭一億人口,中度至重癥地貧患者約30萬人且正以每年約10%的速度遞增。我國以南方地區(qū)多見,廣西以12.22%~23.02%地中海貧血基因高攜帶率居我國首位,其次廣東、海南等省。
治療方式有限,急待新興療法出現(xiàn)
地中海貧血根據(jù)病情輕重,可以分為三類:輕度、中度和重度。通常情況下,輕型“地貧”無需特殊治療。中間型和重型“地貧”主要采取以下方式:除鐵治療、輸血治療、骨髓造血干細(xì)胞異體移植、脾切除手術(shù)等。
其中,異體造血干細(xì)胞移植是根治“地貧”的方法,但費(fèi)用花費(fèi)巨大,且配型極其困難;其他方法只能夠維持“地貧”患者生命,同樣給家庭帶來極大經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān),且需消耗大量血液資源,患者生活質(zhì)量極低,不能從源頭上根治該疾病。
基因療法有望成為新的治療選擇
近年來,基因療法的出現(xiàn)給患者帶來了希望,其最大的優(yōu)勢在于不需要捐贈,不需要異體移植,而且一次治療可能導(dǎo)致永久性的“治愈”,有望取代目前并不完美的治療方案。
目前,針對地中海貧血的基因治療策略主要分為兩種,基于慢病毒整合的方式和基于基因編輯的方式。策略為:遞送功能性β-血紅蛋白基因拷貝或基因編輯組分至患者的造血干細(xì)胞(HSC),從此替病變的β-血紅蛋白基因完成工作。
基于慢病毒整合
針對慢病毒整合,進(jìn)展速度最快的是Bluebird Bio基因療法LentiGlobin,針對輸血依賴性β-地中海貧血癥(TDT)和鐮刀狀貧血(SCD)的臨床試驗分別進(jìn)行到III期和I/II期,已獲得EMA的加速審評資格并且已向EMA提交了上市許可申請,有望于2019年率先在歐洲上市。
LentiGlobin是一種基于慢病毒載體的體外基因療法,該療法雖表現(xiàn)出極大的潛力,但是半隨機(jī)的載體整合方式,具有致癌風(fēng)險;同時慢病毒中的表達(dá)原件在造血干細(xì)胞長期歸巢和自我更新的過程中會逐漸沉默,使得療效下降,極有可能無法達(dá)到終身治愈的目的。并且這種方法需要大量病毒,即意味著巨額的花費(fèi)花費(fèi)較高。
基于基因編輯
對比基于慢病毒整合的方式,基于基因編輯技術(shù)的基因療法成為了一種可能成本更低、耐久性更佳的治療手段。
在歐洲,CRISPR Therapeutics/Vertex公司利用CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)的在研基因療法CTX001用于治療TDT正處于I/II期臨床試驗中,這也是首個由制藥公司發(fā)起的CRISPR臨床試驗,并且是歐盟批準(zhǔn)的首個。2018年10月,美國FDA批準(zhǔn)CTX001用于嚴(yán)重SCD的臨床試驗申請。
2019年2月25日,兩家公司宣布第一名TDT患者已在I/II期臨床研究中接受CTX001治療。與此同時,它們正在研究用于治療SCD的CTX001,并宣布第一名嚴(yán)重SCD患者已在美國參加I/II期臨床研究,預(yù)計將在2019年中期輸注CTX001。
不同于靶向?qū)е录膊〉娜毕莼颍?/span>CTX001通過切割一種抑制胎兒血紅蛋白(HbF)表達(dá)的BCL11A基因起作用,HbF是一種可以攜帶大量氧的血紅蛋白,通常在出生時表達(dá),成年后被置換為成人血紅蛋白(HbA)。在體外,CTX001通過電穿孔引入患者自體造血干細(xì)胞,然后回輸?shù)交颊唧w內(nèi),可以產(chǎn)生含有高水平HbF的紅細(xì)胞,代替HbA起作用。
二、治療機(jī)理
研究發(fā)現(xiàn),胎兒血紅蛋白HbF其構(gòu)成為(α2γ2),γ-globin具有和β-globin相似的功能,并且編碼該蛋白的基因HBG在貧血患者中序列完好,但到成年期表達(dá)便會被沉默。因此,重新激活患者體內(nèi)γ-globin基因的表達(dá)來彌補(bǔ)缺損的β-globin,被認(rèn)為是治療或緩解這類遺傳性貧血的一個重要策略。
基因編輯(Genome editing)技術(shù)能夠通過插入、缺失或替換的手段對基因組進(jìn)行定點(diǎn)改造,能讓正?;蛱鎿Q突變基因,從而利用基因編輯技術(shù)重新開啟胎兒期的γ珠蛋白的表達(dá),代替有缺陷的β珠蛋白,因此很有可能成為緩解甚至治愈地貧的治療方法。
BCL11A基因的表達(dá)與γ-球蛋白表達(dá)成負(fù)相關(guān),提示在患者造血干細(xì)胞中靶向編輯BCL11A紅系增強(qiáng)子會重新激活HbF的表達(dá),再將高效編輯后的造血干細(xì)胞移植給患者重建造血,可產(chǎn)生高表達(dá)HbF的紅細(xì)胞,且不會影響淋巴細(xì)胞的分化、成熟[2-5]?;诖耍厦嫣岬降腃RISPR Therapeutics/Vertex也正在進(jìn)行體外基因療法的臨床試驗。
三、研究結(jié)果
基因治療地貧示意圖[6]
基于上述機(jī)理,最新研究首先通過比較不同的sgRNA優(yōu)化編輯系統(tǒng),實現(xiàn)了CRISPR/Cas9核糖核蛋白(RNP)在人CD34+造血干/祖細(xì)胞中的高效基因編輯。接著,將編輯過后的CD34+細(xì)胞體外紅系分化后,發(fā)現(xiàn)BCL11A的表達(dá)水平顯著降低,同時HbF的含量得到極大提升。
對多種地中海貧血類型的患者來源CD34+細(xì)胞進(jìn)行編輯的結(jié)果發(fā)現(xiàn),分化后的紅細(xì)胞分化更加成熟、體積和形態(tài)都恢復(fù)至接近于健康細(xì)胞水平。
研究人員通過進(jìn)一步優(yōu)化Cas9原核表達(dá)載體和編輯系統(tǒng),使得CD34+細(xì)胞在體外的編輯效率進(jìn)一步提高到了98%,這樣就可以使得CD34+細(xì)胞中的長期造血干細(xì)胞(LT-HSCs)得到有效編輯。
基因編輯的造血干移植小鼠體內(nèi)后,可以顯著提高紅細(xì)胞的HbF水平
編輯后的造血干細(xì)胞移植至免疫缺陷小鼠體內(nèi)4個月后仍然保持著90%以上的編輯效率,并且能在小鼠骨髓中成功重建人源血液系統(tǒng),同時分化得到的紅細(xì)胞含有高比例的HbF。另外,研究發(fā)現(xiàn)人長期造血干細(xì)胞LT-HSCs在被Cas9編輯后更傾向于被非同源末端連接(NHEJ)的方式修復(fù),而非微同源末端連接(MMEJ)。
小鼠體內(nèi)γ-globin表達(dá)水平在編輯前后對比
SCD患者的細(xì)胞編輯后,HbF水平提升且細(xì)胞恢復(fù)正常形態(tài)
最后,研究人員證明了鐮刀狀貧血病(SCD)人來源的CD34+細(xì)胞也能被高效編輯且在編輯后移植至小鼠體內(nèi)重建人源血液系統(tǒng),同時紅細(xì)胞中HbF的提升水平足以幫助細(xì)胞恢復(fù)正常形態(tài),抵抗鐮刀化。
SCD來源CD34+細(xì)胞編輯后可抵抗鐮刀化
深度測序發(fā)現(xiàn),Cas9 RNP介導(dǎo)的基因編輯是一種極其安全的治療方法
此外,研究人員還用CIRCLE-seq鑒定了一批潛在脫靶位點(diǎn),并對潛在的脫靶位點(diǎn)和上百個可能的白血病突變位點(diǎn)進(jìn)行了深度測序,結(jié)果顯示這些位點(diǎn)并沒有出現(xiàn)異常的插入或缺失,證實了Cas9 RNP介導(dǎo)的CD34+細(xì)胞中的基因編輯是一種極其安全的治療策略。
CIRCLE-seq和深度測序鑒定和分析脫靶位點(diǎn)
四、臨床意義
體外“地貧”患者造血干細(xì)胞、老鼠疾病模型、靈長類疾病模型等數(shù)據(jù)均顯示對“地貧”疾病的徹底治愈完全有效。大量臨床數(shù)據(jù)顯示,HbF只需達(dá)到血紅蛋白總量的30%,即可完全治愈地中海貧血疾病,而此策略(通過CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)編輯β-地中海貧血和鐮刀狀貧血患者造血干細(xì)胞中的BCL11A增強(qiáng)子位點(diǎn),并進(jìn)行自體造血干細(xì)胞移植)所產(chǎn)生的HbF比例高達(dá)40%,因此足以起到治療效果,從而有可能根治此類疾病。
與在基因治療方面處于領(lǐng)先地位的BlueBird Bio公司的慢病毒療法(名為LentiGlobin療法正處于臨床3期)相比,該論文的方法只需要在體外將Cas9蛋白和sgRNA通過電轉(zhuǎn)染被導(dǎo)入患者自體造血干細(xì)胞,然后將其回輸?shù)交颊唧w內(nèi),編輯后的造血干細(xì)胞可以分化為含有高水平HbF的紅細(xì)胞,從而治療血紅蛋白相關(guān)的遺傳疾病。
五、成果轉(zhuǎn)化
綜上所述,CRISPR/Cas9技術(shù)的出現(xiàn)使得我們可以通過重新開啟胎兒期的γ珠蛋白的表達(dá),從而代替有缺陷的β珠蛋白,達(dá)到緩解地貧癥狀的目的,具有很大的臨床轉(zhuǎn)化潛力。另外,目前國內(nèi)還沒有利用此方法治療地中海貧血的臨床實驗,因此有望成為世界首批進(jìn)入臨床階段的基因編輯治療產(chǎn)品。
參考文獻(xiàn):
[1] Wu Y, Zeng J, Roscoe BP, Liu P, Yao Q, Lazzarrotto CR, Clement MK, Cole MA, Luk K, Baricordi C, Shen AH, Esrick EB, Manis JP, Dorfman DM, Williams DA, Biffi A, Brugnara C, Biasco L, Brendel C, Pinello L, Tsai SQ, Wolfe SA, Bauer DE (2018) Highly efficient therapeutic gene editing of human hematopoietic stem cells. Nature Medicine, 2019
[2] Y. Yu, J. Wang, W. Khaled, S. Burke, P. Li, X. Chen, W. Yang, N.A. Jenkins,N.G. Copeland, S. Zhang, Bcl11a is essential for lymphoid development and negatively regulates p53, Journal of Experimental Medicine, 209 (2012)2467-2483.
[3] J. Xu, C. Peng, V.G. Sankaran, Z. Shao, E.B. Esrick, B.G. Chong, G.C. Ippolito, Y. Fujiwara, B.L. Ebert, P.W. Tucker, Correction of Sickle Cell Disease in Adult Mice by Interference with Fetal Hemoglobin Silencing, Science, 334 (2011)993-996.
[4] D.E. Bauer, S.C. Kamran, L. Samuel, X. Jian, F. Yuko, L. Carrie, S. Zhen, M.C. Canver, E.C.Smith, P. Luca, An Erythroid Enhancer of BCL11A Subject to Genetic Variation Determines Fetal Hemoglobin Level, Science, 342 (2013) 253-257.
[5] Canver, M.C. et al. BCL11A enhancer dissectionby Cas9-mediated in situ saturating mutagenesis. Nature 527, 192–197(2015).
[6] Lettre G, Bauer D E. Fetal haemoglobin in sickle-cell disease: from genetic epidemiology to new therapeutic strategies.[J]. The Lancet, 2016, 387(10037): 2554-2564.